[分享]小鼠尾静脉打针的几点理解
在医学研究中，小鼠常常被选为实验对象，进行药理、毒理实验、肿瘤实验及各种急慢
性实验。小鼠目前的给药方式有灌胃给药、腹腔注射、皮下注射、尾静脉注射等。尾静脉注
射是一项重要的给药
方法
快递客服问题件处理详细方法山木方法pdf计算方法pdf华与华方法下载八字理论方法下载
，由于小鼠尾静脉较细，尾静脉难度大，在学生实验中的广泛应用
收到了限制。为此，笔者把实践过程中得出的一些经验介绍如下，以供大家交流。1. 器材与方法
器材:1ml一次性注射器，棉球，纱布，毛巾或面纱手套 方法简介:将小鼠固定在小鼠固定器中，使其尾巴露出。用手指压迫尾根部的两侧片刻，一手指从下面托起尾尖部，与拇指捏住并微微转动，使左或右侧的静脉向上，一手持4号或4.5针头注射器，在距尾尖1/2或1/3处进针。一次注射量为0.05-0.1ml/10g体重。注射完成后拔出针尖，把尾部向注射侧弯曲或以棉球压迫止血。 2. 小鼠尾静脉注射的体会
2.1实验开始之时，应注意检查小鼠固定器是否完好，注射针头是否变钝，否则应注意更换，以免由于实验器材的问题造成不必要的困扰，影响实验的进度。
2.2小鼠尾部的血运十分丰富，在其背、腹及左右两侧有数条动静脉伴行的血管丛。其中背、腹各一根的动脉与左右各一根的静脉最为明显。动脉的位置相对较深且官腔相对较小，不容易刺入，因此常常选择两侧的静脉，且两侧的静脉较容易固定，它的直径平均小于0.6?0.5mm，但当遇到热水，75%酒精，或远红外线的烘烤时，尾静脉明显扩张，半径均为0.9?0.7mm。
2.3压迫尾根部使血管充盈，此外，使用40?左右的热水浸湿鼠尾10~20s或使用75%酒精棉球强擦，软化角质，还可以灯泡靠近鼠尾烤均可使血管更加充盈，清晰。局部还可以使用血管扩张药如硝酸甘油。用热水浸泡鼠尾时，注意水温不要太高，以免烫伤鼠尾，甚至引起脱皮。
2.4在实验过程中，注射器中含有少量气泡便可使小鼠出现呼吸急促，四肢抽搐，然后倒地死亡。所以，在进针前应排尽注射器中的空气，以免空气从静脉进入血液循环，形成空气栓塞，造成小鼠的死亡。
2.5进针时，针尖倾斜面朝上，以针头与鼠尾小于15?的夹角穿入小鼠尾部皮下静脉后，再以近乎平行的角度缓慢进针。进入后，针尖稍微上挑，刺入已经充盈的尾静脉内3~5mm。保持针头刺入点、血管、注射器成一条直线。刺入后肉眼可以看到血管内的针管，先缓注少量药液，若针头前进及推药均通畅，无阻力，且见液体沿静脉走向流动，则
说明
关于失联党员情况说明岗位说明总经理岗位说明书会计岗位说明书行政主管岗位说明书
针头已经准确插入静脉内，
表
关于同志近三年现实表现材料材料类招标技术评分表图表与交易pdf视力表打印pdf用图表说话 pdf
示针头已进入静脉，可继续注入。若推药有阻力甚至针头处出现白色隆起的皮丘，则表明未刺入血管，应重新向尾巴根部移动注射。
2.6进针推药时，因为小鼠尾静脉的血管壁较薄，应保持针管的相对平稳，以免针尖晃动，戳破血管，造成穿刺的失败。一般推药时速度要缓慢，推药要均匀，其速度不宜过快，以免造成小鼠血容量在短时间内急剧上升，造成充血性心力衰竭。
2.7注射时还发现有些小鼠的敏感性较高，即使在轻微刺激下，全身肌肉处于紧张状态，尾巴强直，或是小鼠受到刺激后，烦躁不安，尖叫、乱动，致使穿刺不易成功。此时，应稍等片刻，待动物安静后再行穿刺。
2.8穿刺尾静脉时要用一份平和的心态。穿刺成功了，不骄傲，尽量感受穿刺成功时的那种手感，同时总结出自己的一套成功的手法;失败了，不气馁，不浮躁，继续静下心来练习，相信天道酬勤。
2.9抓住一切可能的机会练习尾静脉。如在上实验课时，对完成教学任务的小鼠不要立即处死，可以充分的将其利用，来进行穿刺尾静脉练习。同时，在练习时，最好能两到三人组或一个小组，相互交流经验，相互学习，共同进步。小鼠尾静脉的穿刺是一个熟能生巧的过程，平时多加强练习，定能有所收获。
![[分享]小鼠尾静脉打针的几点理解](https://swf.iask.com/35yOylCZycz.jpg?ssig=5VQmhn1IkW&Expires=1719868380&KID=sina,ishare&range=0-343263)
浙公网安备 33021202002483