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右美托咪定抑制HMGB1-TLR4-NF-κB信号通路减轻大鼠心肌缺血再灌注损伤研究

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右美托咪定抑制HMGB1-TLR4-NF-κB信号通路减轻大鼠心肌缺血再灌注损伤研究  右美托咪定抑制HMGB1/TLR4/NF-κB信号通路减轻大鼠心肌缺血再灌注损伤研究  金莲锦 胡春阳 李罡 刘岩 李琳 温立勇【Summary】目的:观察右美托咪定(Dex)对心肌缺血再灌注损伤大鼠心肌功能、炎症反应及HMGB1/TLR4/NF-κB信号通路的影响。方法:取75只成年SPF级10周龄雄性SD大鼠。运用可复性结扎LAD法建立心肌缺血再灌注损伤(MIRI)模型。随机均分为假手术组(Sham组)、Dex预处理+MIRI组(Dex组)、Dex+育亨宾+MIRI组(Dex/Yoh组)、育亨宾预处理+MI...

右美托咪定抑制HMGB1-TLR4-NF-κB信号通路减轻大鼠心肌缺血再灌注损伤研究
  右美托咪定抑制HMGB1/TLR4/NF-κB信号通路减轻大鼠心肌缺血再灌注损伤研究  金莲锦 胡春阳 李罡 刘岩 李琳 温立勇【Summary】目的:观察右美托咪定(Dex)对心肌缺血再灌注损伤大鼠心肌功能、炎症反应及HMGB1/TLR4/NF-κB信号通路的影响。 方法 快递客服问题件处理详细方法山木方法pdf计算方法pdf华与华方法下载八字理论方法下载 :取75只成年SPF级10周龄雄性SD大鼠。运用可复性结扎LAD法建立心肌缺血再灌注损伤(MIRI)模型。随机均分为假手术组(Sham组)、Dex预处理+MIRI组(Dex组)、Dex+育亨宾+MIRI组(Dex/Yoh组)、育亨宾预处理+MIRI组(Yoh组)与MIRI组(I/R组),每组15只。比较各组心肌梗死面积(IS/AAR)。运用ELISA检测并比较各组心肌组织与血清TNF-α、IL-6水平。采用Westernblot检测并比较心肌组织HMGB1、TLR-4、MyD88、NF-κB蛋白 关于同志近三年现实表现材料材料类招标技术评分表图表与交易pdf视力表打印pdf用图表说话 pdf 达情况。结果:Dex组、Dex/Yoh组、Yoh组及I/R组心肌组织与血清TNF-α、IL-6水平均高于Sham组,其中Dex组 记录 混凝土 养护记录下载土方回填监理旁站记录免费下载集备记录下载集备记录下载集备记录下载 平均动脉压(MAP)、心率(HR)数值。将胸腔打开,位置为胸骨旁0.5cm,方向为沿着胸骨左缘3~4肋间,分离心包膜,寻找左冠状动脉前降支(LAD),用4-0慕丝线结扎LAD中上1/3,缺血成功的标准为心电图检查ST段弓背向上抬高,维持30min后将结扎丝线解开,再持续灌注2h。最后可见抬高的ST段回落。提示MIRI模型建立成功。1.2.2分组方法及处理75只大鼠随机平均分为假手术组(Sham组)、右美托咪定预处理+缺血再灌注组(Dex组)、右美托咪定+育亨宾+缺血再灌注组(Dex/Yoh组)、育亨宾预处理+缺血再灌注组(Yoh组)与心肌缺血再灌注组(I/R组),每组15只。Sham组只穿线不结扎。Dex组右颈静脉持续泵注Dex1μg/kg,10min+0.7μg/(kg·h),15min后制备模型。Dex/Yoh组经右颈静脉持续泵注育亨宾1mg/kg(kg·h)15min+0.5mg/kg(kg·h)20min。完成5min后给予Dex1μg/kg10min+0.7μg/(kg·h)15min后制备模型。Yoh组经颈静脉持续泵注育亨宾1mg/kg5min+0.5mg/(kg·h)20min后制备模型。I/R组直接制备MIRI模型。1.2.3心肌梗死面积检测(1)于再灌注结束时,将左冠状动脉前降支的结扎线重新结扎,待确定结扎确切后,经右颈静脉快速注射2mL2%伊文氏蓝,使正常心肌组织(蓝色)和缺血危险区心肌组织(未着色)显色充分。(2)肉眼观察缺血危险区显示清楚后迅速摘取心脏,用冰冻0.9%氯化钠溶液在冰上冲洗后剪除心房及多余的结缔组织,在-80℃冰箱中冰冻15min,沿左室长轴切成5片约2mm厚的薄片。(3)将切好的心肌组织薄片置于装满1%氯化三苯基四氮唑(TTC)溶液的6孔板中,使心肌组织充分浸于溶液中。于37℃温箱中孵育15~30min取出,用4%多聚甲醛溶液固定。(4)用照相机拍照,在图片中正常的心肌组织为蓝色,缺血危险区的心肌组织呈红色,梗死的心肌组织呈苍白色。通过相应软件计算心肌梗死面积,心肌梗死面积=缺血梗死区域苍白色的心肌组织/缺血危险区红色的心肌组织(IS/AAR)。1.2.4ELISA检测大鼠心肌组织、血清TNF-α、IL-6浓度(1)将5μL240、120、60、30、15、7.5ng/mL的标准品依次加入标准品孔中,将50μL待檢测大鼠心肌组织和血清样本提取液加入样品孔中,空白孔加双蒸水;(2)将50μLHRP试剂分别加入标准品孔、样品孔中;(3)以轻柔的动作摇晃,将封板膜盖上,在37℃恒温箱中进行1h孵育;(4)将封板膜小心揭掉,将孔内液体弃去。甩干后将300μL洗涤液加入每孔中,30s静置后弃去,重复5次后将孔内液体拍干;(5)将50μL显色剂A、B加入每孔中,振荡混匀,在37℃恒温箱中10min避光孵育;(6)将50μL终止液加入每孔中;(7)空白孔凋零,在450nm波长处对各孔OD值进行测量;(8)依据标准品OD值、浓度将标准曲线绘制出来,进而将样品浓度计算出来。1.2.5Westernblot检测HMGB1、TLR-4、MyD88、NF-κB蛋白表达组织块称重;利用液氮、研钵粉碎组织块;加入RIPA缓冲液(每克组织3mL RIPA),PMSF(每克组织30μL,10mg/mLPMSF),利用Polytron进一步匀浆(15000r/min,1min)维持4℃;加入PMSF(每克组织30μL10mg/mLPMSF),冰上孵育30min;移入离心管,4℃,15000r/min,15min离心;上清液为细胞裂解液,分装-20℃保存;取相同质量的细胞裂解液(体积×蛋白质浓度),并加等体积的2×电泳加样缓冲液;沸水浴3min。把聚丙烯酰胺凝胶中的蛋白质电泳转移到硝酸纤维膜上。转移缓冲液洗涤凝胶和硝酸纤维素膜,将硝酸纤维素膜铺在凝胶上,用5mL移液管在凝胶上来回滚动去除所有的气泡。在凝胶和滤膜外再包一张3mm滤纸(预先用转移缓冲液浸湿),将凝胶夹在中间,保持湿润和没有气泡。将滤纸、凝胶、薄膜、滤纸按照厂家建议方法放入电泳装置中,凝胶面向阴极。将上述装置放入缓冲液槽中,并灌满转移缓冲液以淹没凝胶。按照厂家所示接通电源开始电泳转移。转移结束后,取出薄膜和凝胶,弃去凝胶。将薄膜漂在氨基黑中快速染色,直至分子量标准显现时取出,记录下标准位置。用100mL水洗涤纤维素膜,必要时可用脱色缓冲液。膜置印迹缓冲液中于37℃保温1h。室温下,用PBS-Tween缓冲液洗涤薄膜。用封口机将薄膜封入塑料袋中,尽可能不留空气。5%脱脂奶加在装薄膜的袋中,于室温封闭1h。用总体积300mLPBS-Tween缓冲液,分4次在一浅盘中洗涤薄膜,每次75mL。将稀释好的一抗加在袋内,于4℃孵育过夜。洗涤后加入HRP标记的二抗,于室温下摇动2h。洗涤后将等体积A液和B液加在膜蛋白面上并摇晃使其混合,1min后去尽残液,将膜蛋白面朝上放入荧光化学发光成像系统中进行显影和拍照,用凝胶成像处理系统进行分析。1.3统计学处理采用SPSS21.0软件对所得数据进行统计分析,计量资料用(x±s)表示,比较采用t检验;计数资料以率(%)表示,比较采用字2检验。以P<0.05为差异有统计学意义。2结果2.1各组心肌组织与血清炎性指标比较Dex组、Dex/Yoh组、Yoh组及I/R组心肌组织与血清TNF-α、IL-6水平均高于Sham组,其中Dex组
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