猪繁殖与呼吸综合征病毒SYBRGreen_荧光定量RT_PCR方法的建立
江 西 农 业 大 学 学 报 第 31 卷第 6期 Vo l. 31 , No. 6
2009 年 12 月A c ta A gricu ltu rae U n ive rsita tis J iangxien sis D ec. , 2009
( ) 文章编号 : 1000 - 2286 200906 - 1074 - 05
猪繁殖与呼吸综合征病毒 SY BR Green ?
荧光定量 RT - PCR方法的建立
王守山 ,李玉保 ,孟喜龙 ,马 飞 ()聊城大学 农学院 ,山东 聊城 252359
摘要 :根据文献合成 1 对针对 PRR SV 毒株 O R F6 基因高度保守序列 的 引 物 , 建 立 用 于 检 测 PRR SV 的 SYBR
Green ?荧光定量 R T - PCR 诊断方法 。提取 PRR SV - LC 病毒 RNA ,经所建立的荧光定量 R T - PCR 方法扩
( ) ( ) ( )增 ,可获得特异的扩增曲线 ,而日本乙型脑炎病毒 J EV 、猪伪狂犬病毒 PRV 、猪细小病毒 PPV 和猪圆环病
( )毒 PCV 进行同条件检测 ,结果为阴性 ;方法可检测到 1 TC IDPRR SV ,比琼脂糖凝胶电泳敏感度高 10 ,100 50
倍 。结果表明 ,所建立的 PRR SV 荧光定量 R T - PCR 诊断方法特异性好 、敏感性高 ,可进一步应用于猪繁殖与
呼吸综合征的临床诊断和科学研究 。
关键词 :猪繁殖与呼吸综合征病毒 ;荧光定量 R T - PCR; 检测
中图分类号 : S852. 65 文献标识码 : A
D evelopm en t of SY BR Green ? Fluorescence Quan tita tive
RT - PCR A ssay for D etection of Porc ine Reproductive
and Resp ira tory Syndrom e V irus
WAN G Shou - shan, L I Yu - bao, M EN G X i - long, MA Fe i
( )Co llege of A gricu ltu re, L iaocheng U n ive rsity, L iaocheng 252359 , Ch ina
A b stra c t:A cco rd ing to the refe rence, a p a ir of p rim e rs ba sed on h igh ly con se rva tive OR F6 gene sequence of PRR SV we re syn the sized. The quan tita tive SYBR Green ?R T - PCR m e thod fo r de tec ting PRR SV wa s e s2
( ) tab lished. PRR SV RNA wa s extrac ted and then amp lified u sing the F luo re scence Q uan tita tive FQ R T - PCR. Sp ec ific amp lifica tion cu rve wa s ob ta ined a s exp ec ted. U nde r the sam e cond ition s, howeve r, the re su lts of the de tec tion of J EV , PRV , PPV and PCV by the FQ R T - PCR we re a ll nega tive. The FQ R T - PCR cou ld de tec t the lea st 1 TC IDviru s, and the sen sitivity wa s 10,100 tim e s h ighe r than tha t of A ga ro se Ge l E lec tro2 50
p ho re sis. The re su lts ind ica te tha t the FQ R T - PCR m e thod in th is re sea rch ha s h igh sen sitivity and sp ec ific i2 ty, and cou ld be fu rthe r app lied to PRR SV c lin ica l d iagno sis and re sea rch.
( ) Key word s: po rc ine rep roduc tive and re sp ira to ry synd rom e viru s PRR SV ; fluo re scence quan tita tive R T
( ) - PCR FQ R T - PCR ; de tec tion
( )猪繁殖与呼吸综合征 Po rc ine rep roduc tive and re sp ira to ry synd rom e, PRR S是目前影响全球养猪业
[ 1 ] [ 2 ] 的最重要疾病之一 ,可引发妊娠母猪晚期流产 、早产和产死胎 ,以及仔猪与育肥猪的呼吸道疾病 。
收稿日期 : 2009 - 07 - 26 修回日期 : 2009 - 09 - 26
( )( )基金项目 :山东省自然科学基金项目 Y2007D78 和聊城大学博士科研启动基金项目 31805
( ) 作者简介 :王守山 1968 - ,男 ,讲师 ,硕士 ,主要从事动物分子病理学研究 。
( ) ( ) 检测 PRR SV 常规的方法包括病毒分离和鉴定 、间接免疫荧光抗体试验 IFA 、血清中和试验 SN 、反 [ 2 ] ( ) ( 转录 - 聚合酶链反应 R T - PCR 以及序列测定等 。荧光 定量 PCR F luo re scence quan tita tive R T -
)PCR , FQ R T - PCR 是近几年发展起来的病原分子检测技术 ,与常规 R T - PCR 比较 ,具有重复性好 、灵 [ 3 , 4 ] 敏度高 、定量准确 、工作效率高等优点 ,并可避免扩增产物污染所导致的假阳性发生 ,且不必使用对 人体有害的染色剂 。 SYBR Green I模式的荧光定量 PCR 是利用荧光染料 SYBR Green I与 DNA 双链结 合后释放荧光的特点而建立的一种应用较广的荧光定量 PCR 技术 ,它具有成本低 、不需设计探针 ,且适 [ 5 ] 合于高度变异的基因检测等优点 。
本研究旨在建立 PRR SV SYBR Green ?荧光定量 R T - PCR 技术 ,为兽医临床诊断 PRR S提供一种 快速 、准确的方法 ,并为开展大规模的 PRRS流行病学调查 、疫情监测和进一步的科学研究提供技术依据 。 1 材料与方法
1. 1 毒株及主要试剂
[ 6 , 7 ] ( ) PRR SV LC毒株为聊城大学预防兽医研究室分离并保存 。猪乙型脑炎病毒 JEV 、猪伪狂犬病 ( ) ( ) ( )毒 PRV 、猪细小病毒 PPV 、猪圆环病毒 PCV 均为蒋文明博士惠赠 ; Trizo l、AMV、H S - Taq、RNA 酶
()抑制剂 、DNA M a rke r均购自宝生物工程 大连 有限公司 ; SYBR Green?染料购自上海开放科技有限公
() ( ) 司 ; p GEM - T载体系统试剂盒 A3610 、体外转录系统试剂盒 P1440 购自美国 P rom ega 公司产品 ; 胶
()回收 小量 试剂盒购自上海华舜生物工程有限公司 ; iCyc le r iQ TM 荧光实时多波长 PCR 检测系统为美 国 B io - R ad公司产品 。
1. 2 实验方法
1. 2. 1 引物设计与合成 根据文献 [ 8 ]合成引物 ,引物由上海生物工程有限公司合成 。上游 P1: 5 ’- TTTGGGGA GTGTACTCGGCCA TA GA - 3 ’;下游 P2: 5 ’- GGCA TA TTTGACAA GGTTTACCACT - 3 ’。
μ1. 2. 2 病毒 RNA 的提取 用 RNA 提取试剂盒按其操作说明
书
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提取病毒培养物的总 RNA ,溶于 30 L D EPC处理水 , 20 g / kg琼脂糖凝胶电泳鉴定 RNA 的质量 , - 70 ?保存备用 。
1. 2. 3 一步法 FQ R T - PCR 及扩增片段的亚克隆 以提取的总 RNA 作为模板 , PCR 扩增 PRR SV 目的
μμμμ片段 。反应体系为 25 L ,模板 5 L ,依次加入 10 ×PCR B uffe r 2. 5 L , RNA 酶抑制剂 1 L , 10 mmo l / L
μμμμμdN TP混合液 1 L , AMV 反转录酶 1 L , H s - Taq聚合酶 0. 5 L , 25 mo l /L 的上下游引物各 1 L ,
μ 1 % D EPC水 12 L。反应条件 : 42 ?反转录 45 m in, 95 ?预变性 3 m in; 94 ? 30 s, 63 ? 30 s, 72 ?30 s, 30个循环 ; 72 ?延伸 8 m in。 R T - PCR 产物作 15 g / kg琼脂糖凝胶电泳分析 。在紫外灯下用刀片 割取特异性条带 ,用胶回收试剂盒纯化 PCR 产物 ,连接到 p GEM - T 载体 。取连接产物转化 E. co li JM
109感受态细胞 ,轻轻混合均匀 ,冰浴 30 m in, 42 ?水浴热休克 90 s,快速取出转移至冰浴 3 m in,加入
μμ800 L SOC培养基 , 37 ?, 150 r /m in振荡培养 3 h,使抗性复苏 。取 200 L 培养液涂布 LB 固体培养
(μμμ) 基平板 含 100 g /mL 氨苄青霉素 , 100 g /mL IPTG和 50 g /mL X - Ga l, 37 ?温箱中倒置培养过夜 ,
进行蓝白斑筛选 。
(μ)挑选白斑单克隆菌落在 LB 液体培养基 含 100 g /mL 氨苄青霉素 中 37 ?振荡培养过夜 ,采用碱 裂解法进行小量质粒的提取 , 10 g / kg琼脂糖凝胶电泳检测 。重组质粒进行 PCR 鉴定 ,阳性质粒送上海 博亚生物技术有限公司测序 。选出阳性重组质粒用于体外转录制备 RNA 探针 ,阳性重组质粒保存于 -
20 ?备用 。
1. 2. 4 FQ R T - PCR 条件优化 将制备的 RNA 样品作为标准品 ,对影响 PCR 的各成分浓度和参数 2 + ()引物浓度 、M g浓度 、退火温度及循环次数 进行优化组合 。
1. 2. 5 体外转录标准品和标准曲线的制备 阳性重组质粒根据体外转录系统试剂盒说明书进行线性 化 ,并经碱性苯酚 、氯仿的抽提纯化 。按体外转录系统试剂盒说明书进行体外转录 。 15 g / kg琼脂糖凝 胶电泳鉴定体外转录 RNA 的质量 。即为 RNA 标准品 ,分装后 - 80 ?保存备用 。
用核酸测定仪测定 RNA 标准品的浓度 ,进一步换算成拷贝数 。对标准品进行一步法 R T - PCR 鉴 - 3 - 6定 。将鉴定好的标准品进行 10 ,10 系列梯度稀释 ,进行一步法 FQ R T - PCR 反应 ,以模板起始拷贝
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( )数的对数为横坐标 ,以对应样品临界循环数 Thresho ld cyc le, C t为纵坐标制作标准曲线 ,得到标准方程 。
1. 2. 6 特异性试验 应用上述优化的荧光定量 PCR 条件 ,同条件下检测 PRR SV LC、J EV、PRV、PPV、
PCV ,利用 PCR 产物制作溶解曲线 ,且进行 10 g / kg琼脂糖凝胶电泳 ,进行特异性试验 。
6 6 1. 2. 7 敏感性试验 将测定毒价为 10TC ID 的 PRR SV LC作 10倍梯度稀释 ,为 10TC ID ,1 TC ID50 50 50
μ 共 7 个梯度 ,应用上述优化的荧光定量 R T - PCR 方法对稀释的病毒进行检测 ,反应结束后 ,取 5 L 扩增产物进行 10 g / kg琼脂糖凝胶电泳 ,比较建立的荧光定量 R T - PCR 方法与琼脂糖凝胶电泳之间的敏 感性差异 。
2 结果分析
2. 1 优化的 FQ R T - PCR 条件
2 + μ对引物浓度 、M g浓度 、退火温度及循环次数等条件进行优化 ,反应体系 : 模板 5 L ,依次加入 10
μμμμ ×PCR 缓冲液 2. 5 L , 25 mmo l /L M gC l1 L , RNA 酶抑制剂 1 L , 10 mmo l /L dN TP 混合液 1 L , 252
μμμμμ ×SYBR 染料 1 L , AMV 反转录酶 1 L , H s - Taq 聚合酶 0. 5 L , 25 mo l /L 的上下游引物各 1 L ,
μμ1 % D EPC水 10 L ,体系为 25 L。在 iCyc le r iQ TM 型实时荧光 PCR 仪上进行扩增 。反应条件 : 42 ? 反转录 45 m in, 95 ?预变性 1 m in, 94 ?变性 30 s, 63 ?退火 30 s, 72 ?延伸 30 s, 80 ?收集荧光 8 s, 共 40 个循环 。 R T - PCR 反应结束 后 , 进
行熔解 曲 线分 析 : 95 ? 10 s, 65 ? 10 s,
然后 每 个 循 环 温 度 增 加 0. 5 ?, 60 个 循
环 ,整个过程收集荧光 。
2. 2 FQ R T - PCR 标准曲线
FQ R T - PCR 扩增标准曲线为 : Y = -
( ) 3. 297X + 43. 028 r = 0. 998 。其 中 Y 代
表 C t值 , X 代表模板量的对数值 。标准曲
线的斜率接近理想值 - 3. 322 ,相关系数也 - 3 - 6 - 3 - 6 图 1 体外转录 RNA 模板 10 ,10 系列稀释制作标准曲线 接近 1. 000 , 在 10 ,10 的稀释范围内 - 3 - 6 Fig. 1 Standard curve of 10,10serial dilution of vitro transcrip t RNA () 有良好的线性关系 图 1 。
2. 3 FQ R T - PCR 方法的特异性
FQ R T - PCR 同条件下扩增 PRR SV LC、J EV、PRV、PPV、PCV 的扩增曲线 、PCR 产物的溶解曲线 ,以
及 PCR 产物的 10 g / kg琼脂糖凝胶电泳结果 。
以所提取的 PRR SV LC、J EV、PRV、PPV、PCV 各 RNA 为模板进行 FQ R T - PCR 扩增 。只有 PRR SV LC能够扩增出特异的曲线 ,同样溶解曲线只有 PRR SV LC样品显示一个峰以及琼脂糖电泳只有 PRR SV LC样品见 1 条 266 bp 左右的条带 ,表示本研究建立的 PRR SV 荧光定量 R T - PCR 的特异性较好 ,扩增
() 体系较为理想 图 2、图 3 。
()()图 2 PRR SV LC、J EV、PRV、PPV、PCV 为模板的 FQ R T - PCR 扩增曲线 A 和溶解曲线 B () () F ig. 2 Amp lifica tion A and m e lt B cu rve of PRR SV LC、J EV、PRV、PPV、PCV
2. 4 FQ R T - PCR 方法的敏感性
6 10TC ID ,1 TC ID PRR SV LC作为模50 50
板进行荧光定量 R T - PCR 检测 。结果发现 6 10TC ID ,1 TC ID PRR SV LC都可以得到50 50
扩增曲线 ,但是由于循环数定为 40 个 ,所以
1 TC IDPRR SV LC 的 反 应 管 并 没 有 完 成 50
“S”型扩增曲线 , 不过从熔解曲线可以判定 ,
扩增产物是特异的 。将 PCR 产物进行 10 g / kg
琼脂糖电泳 ,可见特异性条带 ,但是在 1 TC ID 50
PRRSV LC的模板 , PCR 产物电泳未见特异性 图 3 荧光 R T - PCR 产物的电泳结果 结果 ,可见 FQ RT - PCR 方法比普通琼脂糖电
F ig. 3 A ga ro se ge l e lec trop ho re sis of FQ R T - PCR () 泳方法敏感度高 10,100倍 图 4、图 5。注 : 1. DNA M arker; 2. PRRSV LC; 3. JEV; 4. PRV; 5. PPV; 6. PCV
6 图 4 10TC ID ,1 TC ID PRR SV LC模板扩增曲线及溶解曲线50 50
6 () () F ig. 4 Amp lifica tion A and m e lt B cu rve of 10TC ID ,1 TC ID PRR SV LC50 50
3 讨 论
因为 PRR SV 侵害免疫系统 ,并能够形成
持续性感染 ,免疫预防比较困难 ,因此该病已 [ 1 , 9 ] 成为危害养猪业的重要传染病 。我国目
前检测 PRR SV 常规的方法包括病毒分离和
( ) 鉴定 、间接免疫荧光抗体试验 IFA 、血清中
( ) 和试验 SN 、原位杂交 、免疫组化 、反转录 - [ 2 , 10 , 11 ] ( )聚合酶链反应 R T - PCR 等 。比较而
言前几种检测方法耗时长 、操作繁琐 ,而 R T
- PCR 具有简单快捷 、准确等优点 。 FQ R T
- PCR 作为一种核酸定量检测技术 ,是在常 6 规 PCR 基础上加入荧光物质 ,可对目的基因 图 5 10TC ID ,1 TC ID PRR SV LC模板 R T - PCR 电泳结果50 50 [ 12 ] 6 的起始水平进行准确定量检测 ,与其他定 F ig. 5 R T - PCR re su lts of 10TC ID ,1 TC ID50 PRR SV LC50
6 (量 PCR 技术 如有限稀释法 、内对照 PCR、竞 注 : 1,7: 10TC ID ,1 TC ID PRR SV LC模板 ; 8: DNA M a rke r50 50
) 争性 PCR 相比 ,具有重复性好 、灵敏度高 、定量准确 、工作效率高等优点 ,并可避免扩增产物污染所导
[ 3 ] 致的假阳性发生 ,且不必使用对人体有害的染色剂 。本试验应用一步法 R T - PCR 方法进行实时荧光定量 。该方法不需构建 cDNA 文库 ,即 cDNA 合成与 PCR 反应在同一 B uffe r及酶中进行 ,快速 、简便 、 敏感 ,减少污染机会 ,减少 RNA 二级结构 ,同时聚合酶具有校正活性 ,减少 PCR 反应的错配率 。标准曲 线的制作采用了 PCR 产物克隆到 p GEM - T载体中 ,进行体外转录 RNA ,以 RNA 梯度稀释作为标准品 进行一步法 R T - PCR 实时荧光定量检测 ,这种制作方法可以同步 、准确反映反应体系中反转录和扩增
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[ 13 ] 过程的效率 ,使结果更为可信 ,未知样品通过与标准曲线比较即可得到定性及定量结果 。
PRR SV 的基因型有两种 , 欧洲型和美洲型 , 在这两种基因型之间 , PR F6 基 因片 段具 有 高度保 守 [ 8 ] 性 。因此 ,本研究选用苏晓鸥等报道的针对 PRR SV O R F6 基因高度保守区域的一对引物 ,该引物既 [ 8 ] 可以用来检测欧洲型的 PRR SV 也可以检测美洲型的 PRR SV 。
( ) ( ) 此外 ,利用所建立的 FQ R T - PCR 方法对猪日本乙型脑炎病毒 J EV 、猪伪狂犬病毒 PRV ,猪细
( ) ( )小病毒 PPV ,猪圆环病毒 PCV 进行同条件检测 ,结果均为阴性 ,表明本研究建立的 R T - PCR 检测方
法具有良好的特异性 。本研究方法能够检测 1 T ICD 50的 PRR SV ,与韦天超等所建立的 PRR SV Taq M an
[ 2 ] - M GB 荧光定量 R T - PCR 方法的敏感性相当 ,但本研究方法不用设计探针 ,成本更低 。由标准曲线 的斜率 、相关系数以及熔解曲线结果显示 ,笔者所建立的 FQ - PCR 技术平台是理想的 ,试验结果准确地 反映每一反应管中的模板量 ,可以应用于 PRR S的临床诊断及流行病学调查 ,且可以用于研究 PRR SV 在猪体内分布规律 ,探讨 PRR S的发病机理 。
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