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干扰素生物学活性测定法(精)

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干扰素生物学活性测定法(精)附录干扰素生物学活性测定法 (细胞病变抑制法) 本法系依据干扰素可以保护人羊膜细胞(WISH)免受水泡性口炎病毒(VSV)破坏的作用,用结晶紫对存活的WISH细胞染色,于波长570nm处测定其吸光度,可得到干扰素对WISH细胞的保护效应曲线,以此测定干扰素生物学活性。 试剂(1)MEM或RPMI 1640 培养液取MEM或RPMI 1640 培养基粉末1袋(规格为1L),加水溶解并稀释至1000ml,加青霉素105IU和链霉素105IU,再加碳酸氢钠2.1g,溶解后,混匀,除菌过滤,4℃保存。 (2)完全...

干扰素生物学活性测定法(精)
附录干扰素生物学活性测定法 (细胞病变抑制法) 本法系依据干扰素可以保护人羊膜细胞(WISH)免受水泡性口炎病毒(VSV)破坏的作用,用结晶紫对存活的WISH细胞染色,于波长570nm处测定其吸光度,可得到干扰素对WISH细胞的保护效应曲线,以此测定干扰素生物学活性。 试剂(1)MEM或RPMI 1640 培养液取MEM或RPMI 1640 培养基粉末1袋(规格为1L),加水溶解并稀释至1000ml,加青霉素105IU和链霉素105IU,再加碳酸氢钠2.1g,溶解后,混匀,除菌过滤,4℃保存。 (2)完全培养液量取新生牛血清10ml,加MEM或RPMI 1640培养液90ml。4℃保存。 (3)测定培养液量取新生牛血清7ml,加MEM或RPMI 1640培养液93ml。4℃保存。 (4)攻毒培养液量取新生牛血清3ml,加MEM或RPMI 1640培养液97ml。4℃保存。 (5)消化液取乙二胺四乙酸二钠0.2g、氯化钠8.0g、氯化钾0.2g、磷酸氢二钠1.152g、磷酸二氢钾0.2g,加水溶解并稀释至1000ml,经121℃15分钟灭菌。 (6)染色液取结晶紫50mg,加无水乙醇20ml溶解后,加水稀释至100ml,即得。 (7)脱色液取无水乙醇50ml、乙酸0.1ml,加水稀释至100ml。 (8)PBS取氯化钠8.0g、氯化钾0.20g、磷酸氢二钠1.44g、磷酸二氢钾0.24g,加水溶解并稀释至1000ml,经121℃15分钟灭菌。 标准品溶液的制备取人干扰素生物学活性测定的国家标准品,按 说明 关于失联党员情况说明岗位说明总经理岗位说明书会计岗位说明书行政主管岗位说明书 书复溶后,用测定培养液稀释至每1ml含1000IU。在96孔细胞培养板中,做4倍系列稀释,共8个稀释度,每个稀释度做2孔。在无菌条件下操作。 供试品溶液的制备将供试品按标示量溶解后,用测定培养液稀释成每1ml约含1000IU。在96孔细胞培养板中,做4倍系列稀释,共8个稀释度,每个稀释度做2个孔。在无菌条件下操作。 测定法使WISH细胞在培养基中贴壁生长。按1︰2~1︰4传代,每周2~3次,于完全培养液中生长。取培养的细胞弃去培养液,用PBS洗2次后消化和收集细胞,用完全培养液配制成每1ml 含2.5×105~3.5×105个细胞的细胞悬液,接种于96孔细胞培养板中,每孔100μl。于37℃、5%二氧化碳条件下培养4~6小时。将配制完成的标准品溶液和供试品溶液移入接种WISH细胞的培养板中,每孔加入100μl。于37℃、5%二氧化碳条件下培养18~24小时。弃去细胞培养板中的上清液。将保存的水泡性口炎病毒(VSV,-70℃保存)用攻毒培养液稀释至约100CCID50,每孔100μl。于37℃、5%二氧化碳培养24小时(镜检标准品溶液的50%病变点在1IU/ml)。然后弃去细胞培养板中的上清液,每孔加入染色液50μl,室温放置30分钟后,用流水小心冲去染色液,并吸干残留水分,每孔加入脱色液100μl,室温放置3~5分钟。混匀后,用酶标仪以630nm为参比波长,在波长570nm 处测定吸光度,记录测定结果。 试验数据采用计算机程序或四参数回归计算法进行处理。并按下式计算试验结果 供试品生物学活性(IU/ml)=Pr×Ds×Es Dr×Er 式中Pr为标准品生物学活性,IU/ml; Ds为供试品预稀释倍数; Dr为标准品预稀释倍数; Es为供试品相当于标准品半效量的稀释倍数; Er为标准品半效稀释倍数。
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