。 。
慧 食品与发酵工业 Food and Fermentation Industries Vo1.29 No.6
木糖发酵酵母 Pichia stipitis木糖还原酶基因
XYL 1在酿酒酵母中的
表
关于同志近三年现实表现材料材料类招标技术评分表图表与交易pdf视力表打印pdf用图表说话 pdf
达
陈叶福 王正祥 方慧英 诸葛健
(江南大学教育部工业生物技术重点实验室,无锡,214036)
摘 要 通过 PCR方法克隆得到树 干毕 赤氏酵母木糖还原酶(XR)基 因 XYL1。将该基 因
连入酵母表达载体 pYX212的强启 动子磷 酸丙糖异构酶(TPI)启动子下,得到融合表达 载体
pYX—XYL1。通过 电转化 方法将 pYX—XYL1转入酿酒酵母 Saccharonmyces cerevisiae W303—
1A中,酶活测定表 明,在酿酒酵母 中树干毕赤氏酵母木糖还原酶(xR)基 因 XYL1得到活性
表达。2酿酒酵母转化子粗酶 液 中木糖还原酶 活分 别为 0.89u/mg(蛋 白)和 0.83u/ITlg(蛋
白),为供体菌 的 1.5倍 多。与基 因供体菌不 同,木糖还原酶基 因在酿酒酵母 中表达不需木糖
诱导,为组成型表达。树干毕赤 氏酵母木糖还原酶(XR)基 因 XYL1的成功表达为后 续的利
用木糖的酿酒酵母菌株 的构建奠定了基础。
关键词 树干毕赤氏酵母,木糖还原酶,酿酒酵母,基因表达
木质纤维素类物质是地球上最主要的可
再生资源。将木质纤维素生物转化生成 乙
醇,可以缓解石油 日益枯竭的压力,同时具有
绿色环保的社会效益。木质纤维 素由纤维
素、半纤维素和木质素 3种成分构成。其中
纤维水解得到葡萄糖,可为微生物直接利用。
而含量仅次于纤维素的半纤维素水解后其产
物中除了葡萄糖外,另一种主要成分是 D 木
糖,最高可 占半纤维 素水解糖类的 34%【11。
因此如何将木糖生物转化生成乙醇是实现木
质纤维素生物转化生产乙醇的关键环节。许
多细菌、酵母和真菌可以发酵木糖产生乙醇。
但是伴有大量副产物生成并 且木糖 利用缓
慢,无法满足商业化乙醇生产的要求L2】。一
般而言,酵母通过 2步反应将木糖转化成木
酮糖。在第 1步反应中,以 NADPH[/NADH
为辅酶,在木糖还原酶催化下木糖被还原生
成木糖醇,接着木糖醇再 以 NAD为辅酶。通
过木糖醇脱氢酶被氧化生成木酮糖。而在细
菌中,木糖经过木糖异构酶一步反应生成木
酮糖。无论在酵母中还是在细菌中,木酮糖
都会被木酮糖激酶磷 酸化生成 5一磷酸木酮
第一作者 :博士研究生。
收稿时间:2002—09—13。改 回时间:2002—11—06
14
糖,5 磷酸木酮糖再进入磷酸戊糖途径而进
一 步代谢L 3l。
酿酒酵母具有耗糖快 、乙醇耐受力高、对
水解糖液中有毒物质抗性强等优点,一直是
乙醇生产中最常用菌种。酿酒酵母不能利用
木糖L4】,却能利用木酮糖。因此。可 以将 细
菌或酵母中木糖到木酮糖的代谢步骤引入酿
酒酵母中来构建利用木糖的酿酒酵母。将不
同细菌的木糖异构酶基因导入酿酒酵母中构
建木糖利用酵母均未获得成功[ ·引。许多学
者尝试将树干毕赤氏酵母的木糖还原酶和木
糖醇脱氢酶途径导入酿酒酵母中并获得一定
成功。文中将树干毕赤氏酵母的木糖还原酶
基因导入酿酒酵母中,并得到活性表达。
1 材料与方法
1.1 材 料
1.1.1 菌株 和载体
大 肠 杆 菌 宿 主 菌 株 Escherichia coli
M109,酿酒酵母宿 主菌 株为 Saccharomyces
cerevisiae W303—1A,由本实验室保藏。树干
毕赤氏酵母 Pichia stipitis CBS 5773(NRRL
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第 29卷 第 6期 陈叶福等 :木糖发酵酵母 Pichia stiIMtis木糖还原酶基因 XYL1在酿酒酵母中的表达
Y一7124)由美国农业部微 生物基 因组学和
生物工艺学研究室 Kurtzman教授惠赠。酵
母表达载体 pYX212为 Novagen公司产品,
带有 TPI强启动子。
1.1.2 培养基和培养条件
大肠杆菌 E.coli JM109及转化子为 LB
培养基,37℃静止和振荡培养。酵母菌及转
化子为 YEPD培 养基或 YNB培养基,30℃
静止或振荡培养。
1.1.3 酶、抗生素及试剂
实验所用 DNA聚合酶和限制性 内切酶
为宝生物工程(大连)有限公司产品。抗生素
为华美生物工程公 司产品。PCR产物纯 化
试剂盒、胶回收试剂盒为上海华舜生物工程
有限公司产品。所用试剂为分析纯。
1.2 实验方法
1.2.1 P. NRRL Y一7124 基 因 组
DNA的制备
按参考文献[7]的方法进行。
1.2.2 引物设计及 目的基 因 PCR扩增
根据 NCBI公布的 P. 木糖还原
酶基因XYL1的序列信息设计下列引物
引 物 P-f: 5’一CGC n CTAT一
’A 4G丁 A.3
引 物 P-r: 5’一GAAoG( CCAGAACA—
GAGTTCA(、广3’
其中引物 P-f的 5’端引入了 BamHI位
点,引物 P—r的 5’端 ApaI位点。
PCR扩增条件 :100t~L反应体系。94℃
变性 10min,加入 TaKaRa Ex Taq DNA聚合
酶 2单 位,混合 后加 入 30 L矿 物油 进 行
PCR反 应(9413 ,60s;58℃,60s;72℃ ,120s),
经过 30个循环后,72℃延伸 10min。
1.2.3 DNA 重 组、大 肠 杆 菌转 化 及 阳性 转
化子 筛选
PCR扩增产物经 PCR产物纯化试剂盒
纯化,BamHI、ApaI酶切电泳分离 回收约
1.6kb的 PCR产物与经相同酶切的 pYX212
连接后 转化大肠 杆菌 JM109,在含 100/~g/
mL氨苄青霉素的 LB平板上检出转化子,提
取质粒,酶切电泳鉴定。
1.2.4 酿酒酵母转化及重组子的筛选
酵母转化按改进的电穿孔法[ 】进行,转
化后涂布不含尿 嘧啶的 YNB葡萄糖平板 ,
挑选阳性重组子进一步测定其木糖还原酶酶
活 。
1.2.5 酶 粗提液 的制备
接种划线分离 的酶母 转化子 单菌落入
20mL YNB(不含尿嘧啶)液体培养基,30℃,
200r/min摇床培养至对数中后期,接种 5mL
入 50 mL的 YNB(不含尿嘧啶)液体培养基
中,30℃,200 r/min摇床培养至静止期。离
心收 集菌体,用 10 mmol/L,pH7.4的 (含
EDTA 1retool/L)磷酸钾缓冲液洗涤 1次,离
心后用适量 100 mmol/L,pH7.4的磷酸钾缓
冲液重悬菌体。吸 1mL菌悬液到装有 1mL
玻璃株 (0.1 ram)的破壁专用管 中,破 壁器
(BE BEATER)4600 r/rain破壁 30 S,冰
浴冷却 1rain,重复破壁 6次。破壁后高速离
心,上清液即为酶粗提液用于酶活和蛋白含
量测定。
1.2.6 木糖还原酶酶活测定
用分光光度计在 340 nln处测定 NADH
依赖的木糖还原酶活力。反应体系中包括 :
100mmol/L 的 磷 酸 钾 缓 冲 液 (pH7.4),
0.2mol/L木糖,0.15 retool/L辅酶 NADH。
加入适 量的粗酶液 启动 反应。比酶活 (U/
rag)用每毫克总蛋 白每分钟 内氧化 NADH
生成 NAD的微摩尔数表示。
粗酶液中的蛋 白浓度用 Bradf0rd【9】方法
测量,以牛血清蛋白作为
标准
excel标准偏差excel标准偏差函数exl标准差函数国标检验抽样标准表免费下载红头文件格式标准下载
。
2 结果与讨论
2.1 P.sti tis木糖还原酶基因的克隆及酵
母表达载体的构建
以 P.stipitis NRRL Y-7124 基 因 组
DNA为
模板
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,用 引物 P—fl和引物 P'r2进 行
PCR反应,PCR产物经 电泳表明,在 1.6kb
左右有一 明显条带,非特异性扩增不 明显。
将 PCR产物用 BamHI、ApaI双酶切、胶回
】5
趼 蠢 缀
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食品与发酵工业 Food and Fermentation Industries Vo1.29 No.6
收纯化后与经 BamHI、ApaI双酶切,胶 回
收的酶母表达载体 pYX212大 片段连接 (如
图 1所示),转化 E.coli JM109,挑选 阳性转
化子抽提质粒进行酶切鉴定(图 2)。
图 1 表达载体 pYX—XYLI的构建
kb
23
9.4
6.6
4-4
2.3
2.0
kb
2.0
1.0
0.75
O.5
0I2
0.1
1一pYX212/BamHI:2一XDNA/Hind m Marker;
3一pYX-XYL1/BamH1+ApaI:
4—-DL2000 Marker;5—-pYX—。XYL1/EcoRI
图 2 重组表达载体 pYX.XYL1的酶切鉴定
2.2 表达载体 pYX.XYL1的酶切鉴定
将 表 达 载 体 pYX.XYL1用 BarnHI、
A抛 I双酶切,应释放 出 1.6kb的没有启动
子的 XYL1结构基因;用 EcoRI酶切,应释
放 出 600 bp的特征片段。电泳结果与分析
结果相同,证明质粒构建成功。
2.3 P.stipitis木糖还原酶基因XYL1在酿
16
酒酵母 W303.1A中的表达及重组子 的木糖
还原酶酶活测定
将重组表达载体 pYX.XYL1用 电穿孔
转化 法 转化 尿 嘧啶 营 养缺 陷 型 酿酒 酵 母
W303.1A。以不含尿嘧啶的 YNB平板筛选阳
性 重 组子,重 新 划 线 分 离 后 挑 选 重 组子
WXY1.1T WXY1.2测 定其 木 糖还 原 酶 酶
活。结果如表 1所示。
表 1 重组子的木糖还原酶酶活测定结果
壁堡堕堡
P.stip/t/s
W 303一JA 。 X纥 1.1 X £1—2
CBS5773
:糖还原酶
酶活/ 0.O1 0.56 0.89 0.83
U.m —l
从酶活测定结果 中可以看出,宿主菌株
S.cerevisiae W303.1A中基本没有木糖还原
酶活。重组子 WXY1.1和 WXY1.2的木糖
还原酶 比酶活分别为 0.83U/mg(总蛋白)和
0.89U/mg(总蛋白),分别为基因供体菌 P.
stipits CBS 5773的 1.5倍和 1.6倍。另外,
木糖 还 原酶 基 因 的表达 在 P.stipits CBS
5773中需要木糖诱导,但是在 S.cerevisiae
W303.1A中却为组成型表达,培养基中不需
添加木糖,在葡萄糖培养基 中即可测得木糖
还原酶酶活。
文中根据发表的木糖还原基因序列,证
明该基因不含 内因子。将克隆得到的没有
5’上游序列的木糖还原酶结构基因与酵母强
启动子磷酸丙糖异构酶 (TPI)启动子融合,
构 成 融 合 表 达 载 体 PYX.XYL1。 pYX.
XYL1转化实验室酵母 S.cerevisiae W303
— 1A,酶活测定结果表明,P.stipits木糖还
原酶基因在酿酒酵母中得到活性表达。其 比
酶活是 基 因供体 菌 P.stipits CBS 5773的
1.5倍多,而该基因在 自身启动子下的表达
水平仅为 P.stipits CBS 5773的 0.7倍。这
表明结构基 因与 TPI启动子的融合提高 了
该酶的表达水平。P.stipits木糖 还原酶 基
因在酿酒酵母中的成功表达后为后续利用木
糖酿酒酵母菌株的构建奠定了基础。
醑 掇 蠢
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空 一
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第 29卷 第 6期 陈叶福等:木糖发酵酵母 Pichia stipitis木糖还原酶基 因 XYL1在酿酒酵母 中的表达
参 考 文 献
1 Schneider H. CRC Crit Rev Biochem Mol Bio1.
1989,9:1~ 40
2 Slininger P J et a1.Bioteehnol Lett,1985,7:431
~ 436
3 JeffriesTW .AdvBiochem Eng,1983,27:1~32
4 Barnett J A. Adv Carbo hydr Chem Biochem,
1976,32:126~ 128
5 Sarthy A V et a1.Appl Enviro Mierobiol, 1987,
53:1996~ 2000
6 Amore R, W ilhelm M , Hollenberg C P.App1. 碣
M icrobiol Biotechnol,1989,30:351--357 叠
7 A.亚当斯等著 .刘子铎译 .酵母遗传学方法实验
指南 .北京 :科学出版社,2000
8 Beeker D M , Guarente L. Methods Enzymol,
1991,194:182~ 187
9 F.奥斯伯等著.颜子颖,王海林译 .精编分子生物
学实验指南 .北京:科学 出版社,1998
Expression of Pichia stipitis Xylose Reductase Gene XYL 1
in Saccharomyces cerevisiae
Chen Yefu W ang Zhengxiang Fang Huiying Zhuge Jian
(Key Laboratory of Industrial Biotechnology of Ministry of Education,
Southern Yangtze University,Wuxi,214036)
ABSTRACT Pichia stipitis Xylose Reductase(xR)Gene XyL 1 was amplified by PCR.The
XyL 1 gene were placed under the triose phosphate isomerase(TPI)promoter in yeast vector
pYX212 to produce the fusion expression vector pYX—XYL1.PYX—XYL1 was transformed into
Saccharomyces cerevisiae W 303—1A by electroporation.Transformants of S.cere~siae contain—
ing XYL 1 of P.stipitis synthesized an active XR.Specific XR activities of two transformants
were 0.89U/mg protein and 0.83U/rag protein respectively,which were more than 1.5 times of
that of P.stipits CBS 5773 strain.Compared with P .stipitss CBS 5773.the XyL 1 in S.cere—
visiae transformants expressed co nstitutively and did not need xylose for induction.
Key words P.stipitis,Xylose Reductase(XR),Saccharomyces cerevisiae,gene expression
本
}I 我国啤酒市场近况浅析
2002年下半年以来,国际大麦市场行 情迅猛上涨,往年 澳大利 亚大麦进 口价为 l4 00元/t,
2003年预计旺季之前,这个价格将突破 3 000元/t的高价。啤酒原料价格涨 了一倍 多,但 国内啤酒厂 商在即
将到来的啤酒销售旺季却不见涨价行动。而且,在高成本之下,高档啤酒市场却初见往年少有的“战火”,啤酒
市场愈加扑朔迷离。
有关人士分析,啤酒行 业 7~8月份 的销售 旺季印将到来,此次国际啤酒大麦减产将促使国内啤酒行业进
行一次大洗牌。据 了解,从 2002年 8月份开始,国际啤酒大麦市场行情迅猛上涨。而中国是大麦市场最大的
买家,购买量 占全球贸易总量 的一半。对于年产量在 10万 t左右的中型啤酒厂家来说,大麦涨价,为啤酒生
产企业带来了相 当大的压力。我国是世界上最大 的啤酒 生产 国,预计 2003年产 量将达到 2 500万 t。按 照
2002年 我国啤酒产量 2 386万 t计算,全国啤酒企业需要消耗 235万 t麦芽或 299万 t啤酒大麦,其中需要进
口啤酒大麦 200--250万 t。但仅能供应我国 150万 t,相差约80万 t。因此可推论,成本上升导致的国内啤酒
业在原料价格高涨、终端产 品市场竞争激烈,提价无力 的双重压迫下,在 2003年 7、8月份啤酒消费 旺季将 出
现新的行业洗牌,因而啤酒厂商都不敢轻言涨价。
目前 国内啤酒企业应对进 口大麦短缺危机 的做 法主要有 2种 :一是预先将 自己一年所需的麦芽数量提前
订下来,但这 需要承担较高的成本 ;二是用低 品质的饲料大麦或者 国产大麦,甚至糖浆替代进 口啤麦,以降低
企业成本,静待新 的大麦供应。 国产啤酒并非不可使用 国产大麦,但也必须承认,由于品质 问题,国产大麦 日
前只用于生产低档啤酒,且国产大麦产量很低 ,大量中高档啤酒仍 需要使用高品质 的进 口大麦。
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麓
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