HEREDITAS (Beijing) 2009年 11月, 31(11): 1087―1093
ISSN 0253-9772 www.chinagene.cn 综 述
收稿日期: 2009−04−18; 修回日期: 2009−08−03
基金项目: 国家自然科学基金项目(编号:30425017, 30670417)和国家科技部基金项目(编号:2005CB522403, 2006AA02Z101)
作者简介: 苏玉(1987−), 女, 在读硕士研究生, 研究方向:表观遗传学。Tel: 010-82802167; E-mail: suyu0000@gmail.com
通讯作者: 朱卫国(1962−), 男, 博士, 教授, 研究方向:表观遗传学。Tel: 010-82802235; E-mail: zhuweiguo@bjmu.edu.cn
DOI: 10.3724/SP.J.1005.2009.01087
DNA甲基转移酶的表达调控及主要生物学功能
苏玉, 王溪, 朱卫国
北京大学基础医学院, 北京 100191
摘要: DNA 甲基化是表观遗传学的重要部分, 同组蛋白修饰相互作用, 通过改变染色质结构, 调控基因表达。
在哺乳类细胞或人体细胞中, DNA 甲基化与细胞的增殖、衰老、癌变等生命现象有着重大关系。对催化 DNA
甲基化的 DNA 甲基转移酶(DNA methyltransferase, Dnmt)的研究可以揭示 DNA 甲基化对基因表达调控的机制,
从而研究与之相关的重要生命活动。文章以 DNA 甲基转移酶作为切入点, 探讨 DNA 甲基转移酶在基因表达调
控中发挥的作用及其主要生物学功能。
关键词: DNA 甲基转移酶; DNA 甲基化; 表观遗传学
DNA methyltransferases: the role in regulation of gene expression
and biological processes
SU Yu, WANG Xi, ZHU Wei-Guo
School of Basic Medical Sciences, Peking University, Beijing 100191, China
Abstract: Both hitone modification and DNA methylation remodulate chromatin structure and control gene expression or
silence. As a main enzyme for DNA methylation, DNA methyltransferase (Dnmt) is not only associated with DNA methyla-
tion, but also links to many important biological activities, including cell proliferation, senescence and cancer development.
This review focuses on structure, regulation and function in biological processes of Dnmt.
Keywords: DNA methyltransferase; DNA methylation; epigenetics
DNA 的甲基化修饰是真核细胞基因表达调控
的特点之一。在哺乳动物的某些基因中, 5′侧翼区为
CpG的高频区, 称为 CpG岛。DNA甲基化多发生在
这些 CpG岛的胞嘧啶第五位碳(C5)上。首先甲基转
移酶与 DNA 结合, 将目标核苷酸反转暴露于 DNA
双螺旋之外, 之后半胱氨酸的亲和基团与胞嘧啶第
六位碳(C6)共价结合, 从 S-腺苷甲硫氨酸(S-adenos-
ylmethionine, Adomet)处转甲基至胞嘧啶 C5 上[1]。
通过这种甲基化机制和组蛋白修饰、染色质重组等
共同作用, 细胞可以不改变 DNA的碱基序列, 而调
控不同基因在不同细胞和组织中的表达。
DNA 的甲基化是通过 DNA 甲基转移酶(DNA
methyltransferase, Dnmt)催化和维持的。一般认为 ,
哺乳动物的 Dnmt有 4种, 分为两个家族: Dnmt1和
Dnmt3(另有一种 Dnmt2, 主要为 tRNA 的甲基转移
酶, 也有报导称Dnmt2具有微弱的DNA甲基转移酶
活性[2])(图 1)。 Dnmt1家族在 DNA复制和修复中维
持其甲基化; 而 Dnmt3家族则催化 CpG从头甲基化
(de novo methylation)。Dnmt3包括了两个从头甲基
转移酶 Dnmt3a、Dnmt3b和一个调节蛋白 Dnmt3L[1]。
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图 1 Dnmt 的家族成员及其结构
Dnmt1的结构域为: N端与某些蛋白特异结合区, C端的酶活性区和及其他未知区域; Dnmt2主要为 tRNA甲基转移酶; Dnmt3a和 Dnmt3b的结
构域为: N端的可变区, PWWP结构域, 半胱氨酸富集区, C端的酶活性区; Dnmt3L有半胱氨酸富集区, 但 C端不具单独的催化活性[1]。罗马数
字表示酶结构中的一些保守序列。
Dnmt1是 1988年 Bestor等[3]从真核生物克隆出
来的第一个 DNA 甲基转移酶, 是一种胞嘧啶 C5 特
异的甲基转移酶。Dnmt1分子量为 183 kDa, 一般认
为 Dnmt1有 3个结构域: C端的催化域, N端的某些
蛋白识别的靶区域, 以及其他未知区域[4]。最近有研
究表明 Dnmt1 的半胱氨酸富集区可与未甲基化的
CpG岛结合, 这说明除了催化区域以外, Dnmt1的其
他结构域也与酶活性有重要关系[5]。Dnmt1 的结构
可能还会通过与氨基酸相互作用和(或)催化域的丝
氨酸磷酸化而发生变化[6, 7], 这可能与酶的活性、与
DNA结合等的调节有关。Dnmt1的主要作用是维持
DNA 甲基化, 这种维持作用可以将 DNA 甲基化信
息传递给子代细胞。
Dnmt3a 和 Dnmt3b 的结构域基本相同, 都在 N
端存在一可变区, 可变区之后至 C端依次为: PWWP
(Proline tryptophan tryptophan proline)结构域, 其可
能与DNA非特异性结合有关; 半胱氨酸富集的锌结
合区域; C端的催化活性区域。
Dnmt3L 是一种 Dnmt3 类似蛋白, 具有半胱氨
酸富集的锌结合区域, 缺少 C 端的酶催化活性域,
所以没有单独的催化活性。它是 DNA从头甲基化的
调节因子, 通过与 Dnmt3a 和 Dnmt3b 的 C 端结合,
可提高它们的催化活性, 正向调节 DNA 从头甲基
化[8]。
1 DNA甲基转移酶的基因表达调控
一般认为 DNA 甲基化通过两种途径抑制基因
表达。第一种是直接阻碍转录因子与甲基化的 CpG
岛结合 , 直接抑制基因表达 [9]; 另一种是通过招募
DNA 甲基结合蛋白 (Methyl-CpG-binding proteins,
MBP)及一些阻碍复合物 , 阻止转录因子与特定
DNA 序列结合, 间接抑制基因表达[10]。本实验室发
现 p21 启动子上的转录因子 Sp1 结合位点的甲基化
并不阻碍 Sp1 结合到其启动子上[11], 说明第一种途
径的抑制作用并不表现在所有基因中。而在第二种
途径中 , Dnmt 和 MBP 可与组蛋白去乙酰化酶
(Histone deacetylase, HDAC)、共抑制子(co-repressor)
和 ATP依赖的染色质重塑蛋白等结合形成抑制复合
物, 与组蛋白去乙酰化和染色体重塑共同作用, 从
而抑制基因表达[12~14]。
Dnmt 与组蛋白修饰相关因子的相互作用是
Dnmt 调控基因表达的重要手段。Dnmt1 的 N 末端
第 11期 苏玉等: DNA甲基转移酶的表达调控及主要生物学功能 1089
可以与 HDAC1、HDAC2 结合, Dnmt3a 和 Dnmt3b
也可以招募 HDAC, 从而使组蛋白去乙酰化 [15]。
Dnmt除了可以与HDAC相互作用外, 还与组蛋白的
甲基化有关。DNMT1 的 N 端可以招募组蛋白甲基化
酶 Suv39h1(Suppressor of variegation 3-9 homolog 1)和
识别 HP1 (Heterochromatin protein 1)[14]。Dnmt3a也
可与 HP1相互作用, 而 HP1具有识别甲基化的组蛋
白、稳定异染色质浓缩结构的作用[16]。研究人员还
发现 DNMT3A 可以直接识别对称甲基化的组蛋白
H4R3me2s (Symmetric methylation of histone H4
arginine 3)[17]。这说明 Dnmt的基因表达抑制作用与
组蛋白修饰和染色质重塑相关。这种机制的意义可
能是: 由于组蛋白的变构在细胞增殖过程中不能直
接传递, 所以通过 Dnmt 对新复制得到的子代 DNA
甲基化型的保留, 得到基因是否转录的信息, 从而
使子代细胞中组蛋白正确地乙酰化或去乙酰化。
DNMT1的 N端可以识别MBP家族中的MBD1
(Methyl-CpG binding domain 1)、MBD3、MeCP2
(Methyl-CpG binding protein 2)[14]。一项研究显示,
大鼠肝细胞瘤中的 Dnmt1、Dnmt3a和 Dnmt3b数量
是正常肝细胞的 4~10 倍, MeCP2 是正常的 8 倍,
MeCP2与MT-1启动子相互作用, 抑制MT-1(一种抗
氧化剂)的表达, 说明 MeCP2 和 Dnmt 都与肿瘤中
MT-1基因表达抑制有关[18]。在 Xist基因沉默的相关
研究中, 另一种甲基结合蛋白 Mbd2 与 Dnmt1 和
HDAC 抑制物有相互作用, 是导致 Xist 基因沉默的
中介[19]。Dnmt通过招募这些蛋白, 与组蛋白修饰和
染色体重塑共同作用, 间接抑制基因表达。
Dnmt 间接的基因沉默作用还表现在与一些共
抑制子的相互作用上。如 Dnmt3a可以与一种转录抑
制蛋白 RP58 结合 , 二者共同抑制基因表达 [20]。
DNMT3B 在 HeLa 细胞中可以与共抑制子 SIN3A
(Kinetochore associated protein)相互作用, 同时也可
与 KIF4A(Kinesin family member 4A)和 condensin相
互作用参与染色质浓缩 [21]。这些研究结果表明 ,
Dnmt 与相关蛋白的相互作用不仅是间接抑制基因
表达的途径, 也是 Dnmt参与组蛋白修饰、染色体变
构的途径。
最近的一些研究还揭示了 Dnmt 与另一组基因
沉默相关因子 PcG(Polycomb group)的相互作用。PcG
蛋白组成的多聚复合物 PRC(Polycomb repressive
complexes)2 和 3 中的 EZH2(Enhancer of zeste ho-
molog 2)可以和 Dn mt 相互作用 , 共同抑制基
因表达, 并且 EZH2 是其靶基因启动子甲基化所必
需的[22]。PRC1 活化相关的 NSPc1(Nervous system
polycomb 1)蛋白, 与 DNMT1、EZH2 共同结合在
HeLa 细胞中的 HOXA7启动子上, 当 NSPc1 缺失时
DNMT1与HOXA7启动子的结合下降, 同时DNMT1
缺少时 NSPc1的结合水平也下降[23]。这些研究结果
说明 Dnmt 参与的 DNA 甲基化的基因沉默机制和
PcG参与的基因沉默机制也存在交互作用。
一些因子可以作用于Dnmt, 导致酶的数量或活
性发生改变, 从而影响 DNA甲基化水平, 影响基因
表达。HDAC抑制剂 apicidin在 HeLa细胞系中可以
下调 DNMT1 水平, 而 DNMT1 的缺少会导致肿瘤
细胞死亡[24]。SNF2(Sucrose non fermenting protein 2)
家族相关的 ATP 依赖染色质重塑蛋白 hSNF2H
(Human sucrose non fermenting protein 2 homologue)
可以与 DNMT1 的 N 端结合, 当 hSNF2H 存在时,
DNMT1 对单核苷酸的亲和力升高[25]。研究发现另
一种 SNF2 家族相关的 ATP 依赖染色质重塑蛋白
LSH(Lymphoid-specific helicase)并不直接导致 DNA
甲基化, 而是通过增加 Dnmt 的数量间接引起甲基
化 [26]。最近的一项研究中 , 小鼠 LSD1 (Lysine-
specific demethylase 1, 又称为 KDM1和 AOF2)的编
码基因 Aof 2被敲除后DNA甲基化水平下降, Dnmt1
水平下降 [27]。组蛋白甲基化酶 SET7 也可调控的
DNMT1 的稳定性。SET7 通过直接与 DNMT1 相互
作用, 并特异地甲基化 DNMT1 的第 142 位赖氨酸,
实现其对 Dnmt1 数量和活性的抑制作用[28]。可见,
这些因子可以通过调控 Dnmt 数量和活性间接参与
基因沉默, 同时 Dnmt 也通过这些因子参与其他水
平的基因表达调控作用。
除了改变 Dnmt的数量或活性, 调控 Dnmt与基
因启动子的结合也是调控 DNA甲基化水平的方式。
本实验室研究发现 HDAC 抑制剂 depsipeptide 在肺
癌细胞系 H719 和 H23、大肠癌细胞系 HT-29 和胰
腺癌细胞系 PANC1 中对 p16、SALL3、GATA4 基因
有激活基因沉默的作用。Depsipeptide 通过降低
H3K9的甲基化, 减少 DNMT1与上述基因启动子的
结合, 最终导致基因沉默[29]。这些结果进一步说明
Dnmt 对基因沉默的影响是与组蛋白结构变化相关
1090 HEREDITAS (Beijing) 2009 第 31卷
的, 二者间存在密切的交互作用。
总之, Dnmt的基因表达调控机制是复杂的、多
水平的。Dnmt 参与了 DNA 甲基化、组蛋白修饰和
染色体重塑, 组成了复杂的表观遗传调控网络, 共
同调控基因表达。
2 DNA甲基转移酶的主要生物学功能
介于上述 Dnmt 的表达调控机制, Dnmt 在多种
生命现象中发挥了重要作用。下面就 Dnmt 的重要
生物学功能进行探讨。
2.1 DNA甲基转移酶与肿瘤
在肿瘤细胞中, 抑癌基因的不正常甲基化抑制
了其表达, 使细胞周期失控, 发生癌变。很多研究都
证明了 DNA甲基化异常与肿瘤发生有关。研究者们
在乳腺癌、大肠癌、胃癌中发现了某些基因的高甲
基化[30~32]。很多癌变组织中 Dnmt 的表达也是增加
的[33, 34]。Dnmt的增加往往发生在 DNA甲基化之前,
可能是引起 DNA甲基化异常的原因。
Dnmt 的两个家族成员在以上机制中的作用是
协同存在的。例如: 下调 DNMT3B在直肠癌细胞中
的表达只能使整体甲基化水平下降 3%, 下调两者却
可使甲基化水平下降 95%[35]。研究发现缺乏 DNMT1
表达的肿瘤细胞仍伴有明显的基因组甲基化和相关
基因沉默[35]。这说明 Dnmt 家族之间在调控肿瘤发
生过程中不仅仅是互补关系, 而可能是相互协同甚
至相互促进的关系。
根据以上结论和推断, 研究人员提出了以 Dnmt
为靶点治疗肿瘤的新思路。5-氮杂 -2′-脱氧胞苷
(5-aza-2′-deoxycitydine, 5-Aza-CdR, Decitabine)作为
一种 Dnmt 抑制剂 , 被证明有抑制肿瘤细胞的作
用[36, 37]。它可以和结合在基因启动子上的 Dnmt 结
合, 抑制其对启动子的甲基化[38, 39]。5-Aza-CdR 在
患有白血病、骨髓增生异常综合征(Myelodysplastic
syndrome, MDS)、非小细胞性肺癌(Non-small cell
lung cancer, NSCLC)的病人中进行了 1期、2期临床
试验, 显示了一定的抗肿瘤作用[40]。但 5-Aza-CdR
存在的一些问题限制了其临床应用, 如其体内半衰
期短、易被胞嘧啶核苷脱氨酶失活、会引起粒细胞
减少的毒副作用等[41, 42]。这些问题也使其实体瘤的
治疗效果受到限制。本实验室研究发现 5-Aza-CdR
可以通过增加 p21 的表达抑制细胞增殖, 而这条通
路是 p53依赖的[36]。这项研究对 5-Aza-CdR的临床
应用具有参考价值, 因为很多实体瘤细胞中 p53 广
泛突变 , 而像白血病等癌症中 p53 突变少 ,
5-Aza-CdR更能发挥其抗肿瘤作用。
2.2 DNA甲基转移酶与发育
DNA 甲基转移酶在胚胎发育中起到了关键作
用。Dnmt3a、Dnmt3b在 ES细胞中表达丰度较高, 成
体组织中很低, ES细胞中的 Dnmt3a和 Dnmt3b失活
会干扰 DNA 从头甲基化, Dnmt3b、Dnmt3a 基因突
变的小鼠胚胎畸形和死亡率极高[43]。在胚胎发育的
早期, Dnmt3a 和 Dnmt3b 功能重叠。Dnmt1 的甲基
化作用发生在植入期, 并在胚胎发育过程中起到了
维持甲基化的作用[43]。这说明, 无论是 DNA从头甲
基化还是 DNA 甲基化的维持都是胚胎发育的重要
环节 , 可能与不同组织细胞中不同基因的表达有
关。另外, DNA 甲基转移酶与胚胎早期植入子宫内
膜也有一定联系。有研究显示 DNMT1、DNMT3A、
DNMT3B可以联合作用, 调节 E钙粘素(E-cadherin)
的表达, 从而调节子宫内膜对胚胎的接受能力[44]。
这也说明 Dnmt 在胚胎发育中起到的重要作用, 异
常的胚胎植入和流产很有可能与 Dnmt的异常有关。
在神经系统的发育中, 记忆的形成与DNA甲基
化的动态变化有关。一项针对大鼠海马区域的记忆
形成的研究显示, 与记忆形成相关的基因的甲基化
水平在条件反射形成前后发生变化, Dnmt的 mRNA
水平也有所改变。当使用 Dnmt抑制剂后, 已经甲基
化的基因去甲基化 , 条件反射过程会减弱或消
失[45]。这说明与记忆形成有关的 DNA 甲基化并非
长期的、稳定的, 而是动态变化的, 记忆形成与表观
遗传学现象有密切关系。
2.3 DNA甲基转移酶与细胞衰老
DNA 的甲基化是 DNA 亚序列水平的一种遗传
信息 , 可以传递给子代细胞。这种传递主要通过
Dnmt1维持。然而衰老的细胞会出现“DNA甲基化
漂移”。研究者们发现在很多衰老的组织和细胞中广
泛存在 DNA 甲基化程度降低的现象[46]。这种 DNA
甲基化漂移会导致 DNA低甲基化或过甲基化。产生
这两种现象的内源性机理与 DNA 甲基转移酶的不
第 11期 苏玉等: DNA甲基转移酶的表达调控及主要生物学功能 1091
正常表达有关[47]。在检测不同年龄人群的 T淋巴细
胞表达 DNMT1、DNMT3A和 DNMT3B水平后, 研
究人员发现 DNMT3A 在 T 淋巴细胞中表达比较低,
且不随年龄变化而变化; 而 DNMT1和 DNMT3B表
达很多, 且随年龄升高而表达下降, 这说明 DNA甲
基转移酶水平下降是组织中甲基化程度下降的原因
之一[48]。本实验室也发现, 正常人成纤维细胞 2BS,
p21启动子的甲基化随年龄变化而波动, 而 p21是细
胞周期相关的重要因子[49]。甲基化漂移会导致基因
的沉默或过表达, 使衰老的组织发生基因表达不正
常, 细胞周期调控机制失调。但是引起 DNA甲基转
移酶水平下降的原因尚未明确。究竟是甲基化漂移
引起衰老 , 还是衰老引起甲基化漂移 , 目前还不
清楚。
2.4 DNA甲基转移酶与其他疾病
DNA甲基转移酶的突变会导致一些遗传性疾病。
如 “着丝点不稳定和面部异常”(Immunodeficiency
centromeric instability and facial anomalies), 即 ICF
综合征, 是由于 DNMT3B 基因突变引起的。它是一
种常染色体隐性遗传病, 主要表现为免疫缺陷和面
部异常[50]。最近有报导显示, 高同型半胱氨酸血症
(Hypohomocysteine, HHcy)与 DNMT1活性降低引起
的 DNA低甲基化有关, 而 HHcy是动脉粥样硬化和
冠心病的独立危险因素[51]。另外, 与 DNA甲基化异
常有关的疾病还有 Rett综合征, 是MeCP2变异导致
的[52]。
总而言之, DNA甲基转移酶对于调控DNA甲基
化, 从而调节染色质结构和基因的表达起着重要作
用。它们之间既是分工合作, 又可以相互协同和促
进。这种调节在衰老、肿瘤、胚胎发育和其他疾病
中都有所体现。对于 DNA甲基转移酶和 DNA甲基
化机制的研究还有很多未知内容, 但其重要生物和
生理意义已经愈发凸现。完善 Dnmt 的研究对重大
疾病的控制和治疗可能会起到重要作用。
参考文献(References):
[1] Cheng X, Blumenthal RM. Mammalian DNA
methyltransferases: a structural perspective. Structure,
2008, 16(3): 341–350.
[2] Hermann A, Gowher H, Jeltsch A. Biochemistry and
biology of mammalian DNA methyltransferases. Cell Mol
Life Sci, 2004, 61(19-20): 2571–2587.
[3] Bestor T, Laudano A, Mattaliano R, Ingram V. Cloning
and sequencing of a cDNA encoding DNA
methyltransferase of mouse cells. The carboxyl- terminal
domain of the mammalian enzymes is related to bacterial
restriction methyltransferases. J Mol Biol, 1988, 203(4):
971–983.
[4] Araujo FD, Croteau S, Slack AD, Milutinovic S, Bigey P,
Price GB, Zannis-Hadjopoulos M, Szyf M. The DNMT1
target recognition domain resides in the N terminus. J Biol
Chem, 2001, 276(10): 6930–6936.
[5] Pradhan M, Esteve PO, Chin HG, Samaranayke M, Kim
GD, Pradhan S. CXXC domain of human DNMT1 is
essential for enzymatic activity. Biochemistry, 2008,
47(38): 10000–10009.
[6] Fatemi M, Hermann A, Pradhan S, Jeltsch A. The activity
of the murine DNA methyltransferase Dnmt1 is controlled
by interaction of the catalytic domain with the N-terminal
part of the enzyme leading to an allosteric activation of the
enzyme after binding to methylated DNA. J Mol Biol,
2001, 309(5): 1189–1199.
[7] Goyal R, Rathert P, Laser H, Gowher H, Jeltsch A.
Phosphorylation of serine-515 activates the Mammalian
maintenance methyltransferase Dnmt1. Epigenetics, 2007,
2(3): 155–160.
[8] Karagianni P, Amazit L, Qin J, Wong J. ICBP90, a novel
methyl K9 H3 binding protein linking protein
ubiquitination with heterochromatin formation. Mol Cell
Biol, 2008, 28(2): 705–717.
[9] Watt F, Molloy PL. Cytosine methylation prevents binding
to DNA of a HeLa cell transcription factor required for
optimal expression of the adenovirus major late promoter.
Genes Dev, 1988, 2(9): 1136–1143.
[10] Bird A. DNA methylation patterns and epigenetic memory.
Genes Dev, 2002, 16(1): 6–21.
[11] Zhu WG, Srinivasan K, Dai Z, Duan W, Druhan LJ, Ding
H, Yee L, Villalona-Calero MA, Plass C, Otterson GA.
Methylation of adjacent CpG sites affects Sp1/Sp3 binding
and activity in the p21(Cip1) promoter. Mol Cell Biol,
2003, 23(12): 4056–4065.
[12] Jones PL, Veenstra GJ, Wade PA, Vermaak D, Kass SU,
Landsberger N, Strouboulis J, Wolffe AP. Methylated
DNA and MeCP2 recruit histone deacetylase to repress
transcription. Nat Genet, 1998, 19(2): 187–191.
[13] Nan X, Ng HH, Johnson CA, Laherty CD, Turner BM,
1092 HEREDITAS (Beijing) 2009 第 31卷
Eisenman RN, Bird A. Transcriptional repression by the
methyl-CpG-binding protein MeCP2 involves a histone
deacetylase complex. Nature, 1998, 393(6683): 386–389.
[14] Turek-Plewa J, Jagodzinski PP. The role of mammalian
DNA methyltransferases in the regulation of gene
expression. Cell Mol Biol Lett, 2005, 10(4): 631–647.
[15] Burgers WA, Fuks F, Kouzarides T. DNA
methyltransferases get connected to chromatin. Trends
Genet, 2002, 18(6): 275–277.
[16] Bachman KE, Rountree MR, Baylin SB. Dnmt3a and
Dnmt3b are transcriptional repressors that exhibit unique
localization properties to heterochromatin. J Biol Chem,
2001, 276(34): 32282–32287.
[17] Zhao Q, Rank G, Tan YT, Li H, Moritz RL, Simpson RJ,
Cerruti L, Curtis DJ, Patel DJ, Allis CD, Cunningham JM,
Jane SM. PRMT5-mediated methylation of histone H4R3
recruits DNMT3A, coupling histone and DNA methylation
in gene silencing. Nat Struct Mol Biol, 2009, 16(3):
304–311.
[18] Majumder S, Ghoshal K, Datta J, Bai S, Dong X, Quan N,
Plass C, Jacob ST. Role of de novo DNA
methyltransferases and methyl CpG-binding proteins in
gene silencing in a rat hepatoma. J Biol Chem, 2002,
277(18): 16048–16058.
[19] Barr H, Hermann A, Berger J, Tsai HH, Adie K,
Prokhortchouk A, Hendrich B, Bird A. Mbd2 contributes
to DNA methylation-directed repression of the Xist gene.
Mol Cell Biol, 2007, 27(10): 3750–3757.
[20] Fuks F, Burgers WA, Godin N, Kasai M, Kouzarides T.
Dnmt3a binds deacetylases and is recruited by a
sequence-specific repressor to silence transcription.
EMBO J, 2001, 20(10): 2536–2544.
[21] Geiman TM, Sankpal UT, Robertson AK, Chen Y,
Mazumdar M, Heale JT, Schmiesing JA, Kim W,
Yokomori K, Zhao Y, Robertson KD. Isolation and
characterization of a novel DNA methyltransferase
complex linking DNMT3B with components of the mitotic
chromosome condensation machinery. Nucleic Acids Res,
2004, 32(9): 2716–2729.
[22] Vire E, Brenner C, Deplus R, Blanchon L, Fraga M,
Didelot C, Morey L, Van Eynde A, Bernard D,
Vanderwinden JM, Bollen M, Esteller M, Di Croce L, de
Launoit Y, Fuks F. The Polycomb group protein EZH2
directly controls DNA methylation. Nature, 2006,
439(7078): 871–874.
[23] Wu X, Gong Y, Yue J, Qiang B, Yuan J, Peng X.
Cooperation between EZH2, NSPc1-mediated histone
H2A ubiquitination and Dnmt1 in HOX gene silencing.
Nucleic Acids Res, 2008, 36(11): 3590–3599.
[24] You JS, Kang JK, Lee EK, Lee JC, Lee SH, Jeon YJ, Koh
DH, Ahn SH, Seo DW, Lee HY, Cho EJ, Han JW. Histone
deacetylase inhibitor apicidin downregulates DNA
methyltransferase 1 expression and induces repressive
histone modifications via recruitment of corepressor
complex to promoter region in human cervix cancer cells.
Oncogene, 2008, 27(10): 1376–1386.
[25] Robertson AK, Geiman TM, Sankpal UT, Hager GL,
Robertson KD. Effects of chromatin structure on the
enzymatic and DNA binding functions of DNA
methyltransferases DNMT1 and Dnmt3a in vitro. Biochem
Biophys Res Commun, 2004, 322(1): 110–118.
[26] Myant K, Stancheva I. LSH cooperates with DNA
methyltransferases to repress transcription. Mol Cell Biol,
2008, 28(1): 215–226.
[27] Wang J, Hevi S, Kurash JK, Lei H, Gay F, Bajko J, Su H,
Sun W, Chang H, Xu G, Gaudet F, Li E, Chen T. The
lysine demethylase LSD1 (KDM1) is required for
maintenance of global DNA methylation. Nat Genet, 2009,
41(1): 125–129.
[28] Esteve PO, Chin HG, Benner J, Feehery GR,
Samaranayake M, Horwitz GA, Jacobsen SE, Pradhan S.
Regulation of DNMT1 stability through SET7-mediated
lysine methylation in mammalian cells. Proc Natl Acad
Sci USA, 2009, 106(13): 5076–5081.
[29] Wu LP, Wang X, Li L, Zhao Y, Lu S, Yu Y, Zhou W, Liu X,
Yang J, Zheng Z, Zhang H, Feng J, Yang Y, Wang H, Zhu
WG. Histone deacetylase inhibitor depsipeptide activates
silenced genes through decreasing both CpG and H3K9
methylation on the promoter. Mol Cell Biol, 2008, 28(10):
3219–3235.
[30] Hoque MO, Rosenbaum E, Westra WH, Xing M, Ladenson
P, Zeiger MA, Sidransky D, Umbricht CB. Quantitative
assessment of promoter methylation profiles in thyroid
neoplasms. J Clin Endocrinol Metab, 2005, 90(7):
4011–4018.
[31] Miyamoto K, Fukutomi T, Akashi-Tanaka S, Hasegawa T,
Asahara T, Sugimura T, Ushijima T. Identification of 20
genes aberrantly methylated in human breast cancers. Int J
Cancer, 2005, 116(3): 407–414.
[32] Feinberg AP, Cui H, Ohlsson R. DNA methylation and
第 11期 苏玉等: DNA甲基转移酶的表达调控及主要生物学功能 1093
genomic imprinting: insights from cancer into epigenetic
mechanisms. Semin Cancer Biol, 2002, 12(5): 389–398.
[33] Baylin SB, Herman JG, Graff JR, Vertino PM, Issa JP.
Alterations in DNA methylation: a fundamental aspect of
neoplasia. Adv Cancer Res, 1998, 72: 141–196.
[34] Robertson KD, Uzvolgyi E, Liang G, Talmadge C, Sumegi
J, Gonzales FA, Jones PA. The human DNA
methyltransferases (DNMTs) 1, 3a and 3b: coordinate
mRNA expression in normal tissues and overexpression in
tumors. Nucleic Acids Res, 1999, 27(11): 2291–2298.
[35] Rhee I, Bachman KE, Park BH, Jair KW, Yen RW,
Schuebel KE, Cui H, Feinberg AP, Lengauer C, Kinzler
KW, Baylin SB, Vogelstein B. DNMT1 and DNMT3b
cooperate to silence genes in human cancer cells. Nature,
2002, 416(6880): 552–556.
[36] Zhu WG, Hileman T, Ke Y, Wang P, Lu S, Duan W, Dai Z,
Tong T, Villalona-Calero MA, Plass C, Otterson GA.
5-aza-2'-deoxycytidine activates the p53/p21Waf1/Cip1
pathway to inhibit cell proliferation. J Biol Chem, 2004,
279(15): 15161–15166.
[37] Wang H, Zhao Y, Li L, McNutt MA, Wu L, Lu S, Yu Y,
Zhou W, Feng J, Chai G, Yang Y, Zhu WG. An ATM- and
Rad3-related (ATR) signaling pathway and a
phosphorylation-acetylation cascade are involved in
activation of p53/p21Waf1/Cip1 in response to
5-aza-2'-deoxycytidine treatment. J Biol Chem, 2008,
283(5): 2564–2574.
[38] Haaf T. The effects of 5-azacytidine and 5-azadeoxycy-
tidine on chromosome structure and function: implications
for methylation-associated cellular processes. Pharmacol
Ther, 1995, 65(1): 19–46.
[39] Jones PA, Taylor SM. Cellular differentiation, cytidine
analogs and DNA methylation. Cell, 1980, 20(1): 85–93.
[40] Momparler RL. Epigenetic therapy of cancer with
5-aza-2'-deoxycytidine (decitabine). Semin Oncol, 2005,
32(5): 443–451.
[41] Momparler RL, Bouffard DY, Momparler LF, Dionne J,
Belanger K, Ayoub J. Pilot phase I-II study on 5-aza-2′-
deoxycytidine (Decitabine) in patients with metastatic
lung cancer. Anticancer Drugs, 1997, 8(4): 358–368.
[42] Lemaire M, Momparler LF, Bernstein ML, Marquez VE,
Momparler RL. Enhancement of antineoplastic action of
5-aza-2'-deoxycytidine by zebularine on L1210 leukemia.
Anticancer Drugs, 2005, 16(3): 301–308.
[43] Okano M, Bell DW, Haber DA, Li E. DNA
methyltransferases Dnmt3a and Dnmt3b are essential for
de novo methylation and mammalian development. Cell,
1999, 99(3): 247–257.
[44] Rahnama F, Thompson B, Steiner M, Shafiei F, Lobie PE,
Mitchell MD. Epigenetic regulation of E-cadherin controls
endometrial receptivity. Endocrinology, 2009, 150(3):
1466–1472.
[45] Miller CA, Sweatt JD. Covalent modification of DNA
regulates memory formation. Neuron, 2007, 53(6): 857–869.
[46] Wilson VL, Smith RA, Ma S, Cutler RG. Genomic
5-methyldeoxycytidine decreases with age. J Biol Chem,
1987, 262(21): 9948–9951.
[47] Richardson B. Impact of aging on DNA methylation.
Ageing Res Rev, 2003, 2(3): 245–261.
[48] Zhang Z, Deng C, Lu Q, Richardson B. Age-dependent DNA
methylation changes in the ITGAL (CD11a) promoter. Mech
Ageing Dev, 2002, 123(9): 1257–1268.
[49] Zheng QH, Ma LW, Zhu WG, Zhang ZY, Tong TJ.
p21Waf1/Cip1 plays a critical role in modulating
senescence through changes of DNA methylation. J Cell
Biochem, 2006, 98(5): 1230–1248.
[50] Xu GL, Bestor TH, Bourc'his D, Hsieh CL, Tommerup N,
Bugge M, Hulten M, Qu X, Russo JJ, Viegas-Pequignot E.
Chromosome instability and immunodeficiency syndrome
caused by mutations in a DNA methyltransferase gene.
Nature, 1999, 402(6758): 187–191.
[51] Jamaluddin MS, Yang X, Wang H. Hyperhomocysteinemia,
DNA methylation and vascular diseas
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