trizol LS试剂使用中文说明书

TRIzol  LS 试剂(ambion)（中文说明书） 货号                      规格                            室温贮存 10296-010                100ml 10296-028    200ml 产品描述 TRIzol LS试剂适用于液体样品，如人、动植物、酵母、细菌或者病毒来源的液体样品，提取高质量的总RNA（DNA和蛋白质也可以）全过程只需1小时。TRIzol LS试剂里含有酚、异硫氰酸胍和其它成分，由于在摇匀样品过程中能很有效地抑制RNase活性，所以TRIzol LS试剂能维持RNA完整性。TRIzol LS试剂允许同时处理大量的样品。 TRIzol LS试剂能从一个样品里有序分离提取RNA、DNA和蛋白质。TRIzol LS试剂均质化样品后，加入氯仿，能看见分层现象，上层是透明的含RNA的水相，中间层，下层是红色的有机相（含有DNA和蛋白质）。水相RNA用异丙醇能沉淀分离；中间层或者下层中的DNA用乙醇沉淀分离；异丙醇沉淀能使蛋白质从酚-醇相的上清液中沉淀出来。沉淀出的RNA、DNA和蛋白质洗脱杂质，重悬后用于下游。 分离的RNA可以用于RT-PCR, Northern Blot analysis, Dot Blot hybridization, poly(A)+ selection, in vitro translation, RNase protection assay, and molecular cloning 分离的DNA可以用于PCR, and Restriction Enzyme digestion, and Southern Blots. 分离的蛋白质可以用于Western Blots, recovery of some enzymatic activity, and some immunoprecipitation. 注意：TRIzol LS试剂适用于液体样品（如，血液和病毒制品）。TRIzol LS试剂与TRIzol试剂仅在它们成分的含量上不同，TRIzol LS试剂的浓度更高，因此相对于同个样品时，TRIzol LS试剂需要量更少。不要将未稀释的TRIzol LS试剂用于固体样品。处理固体样品时，TRIzol LS试剂没有TRIzol试剂效果好，收率要低些。 警告 TRIzol LS试剂含有的成分具有毒、腐蚀性和刺激性，如果处理不慎会有危害健康。请在通风橱里操作，并穿好实验服、戴好手套和安全眼镜。避免直接接触TRIzol LS试剂，会导致皮肤、眼睛或者呼吸道等暴露部位的化学灼伤。如果万一接触了皮肤或者眼睛，请立即用大量水冲洗15min，必要时去医院护理。如果吸入了气体，立刻到通风地方呼吸新鲜空气，必要时去医院护理。 内容和贮存 TRIzol LS试剂有100ml和200ml两种规格的，室温运输和贮存。妥善保管，1年内性质都很稳定。 使用目的 仅用于研究，不能用于人或动物的诊断或治疗。 需要材料 分离RNA、DNA和蛋白质还需要下列材料，但是我们未提供 分离RNA时，需要：氯仿；异丙醇；75%乙醇（DEPC水处理过）；无RNase水或者0.5%SDS；能达到12,000*g的高速离心机；聚丙烯微量离心管；水浴槽（55-60℃）。 分离DNA时，需要：氯仿；100%乙醇；75%乙醇；0.1M柠檬酸钠（10%乙醇）；8mM NaOH；能达到12,000*g的高速离心机；聚丙烯微量离心管。 分离蛋白质时，需要：氯仿；异丙醇；100%乙醇；0.3M盐酸胍（95%乙醇）；1%SDS；能达到12,000*g的高速离心机；聚丙烯微量离心管。 样品准备 样品均质化 1.确定样品类型，在室温下如下表操作。TRIzol LS试剂与样品的体积比为3:1，一定要按指定的量加入TRIzol LS试剂，否则提取RNA会有DNA污染。 注意：当样品少量（<106细胞或者<10mg组织）或者样品体积<0.25mL，为方便提取RNA，需用无RNase水调整样品体积到0.25ml。 样品类型为生物液体时，操作步骤：1.每0.25ml样品加入0.75mlTRIzol LS试剂；2.移液器上下吹匀几次，使样品均匀。注意：污染物质含量高的生物液体（如，全血）应该先用无RNase水按1:1稀释。 样品类型为组织时，操作步骤：1.每50-100mg组织样品或者0.25ml组织悬液加入0.75mlTRIzol LS试剂；2.高速搅拌器混匀样品。注意：采集样品后要立即处理和冷冻组织样品，不能处理未稀释的固体样品。 样品类型为单层贴壁细胞时，操作步骤：1.吸出培养皿中的培养液；2.每10cm2表面积的培养皿加入0.3-0.4mlTRIzol LS试剂,直接加到培养皿里细胞上；3. 移液器上下吹匀几次，在培养皿里直接裂解细胞。注意：不要在培养皿中加水混匀，粘附在皿上的残留培养液足够了。 样品类型为悬浮细胞时，操作步骤：1.离心去除培养液获得细胞；2.每0.25ml样品（来自动植物或者酵母细胞5-10*106，或者细菌细胞1*107）加入0.75mlTRIzol LS试剂；注意：加入TRIzol LS试剂之前切忌洗涤细胞，避免增加mRNA降解机率；3. 移液器上下吹匀几次，裂解细胞，对于酵母或者细菌细胞，可能还需要高速搅拌器来充分裂解。 2.（可选）当样品里脂肪、蛋白、多糖或者胞外物质（如，肌肉、脂肪组织或者块茎植物等材料），需要再加个分离步骤，移除样品里难溶物质。注意：如果你还需要回收样品里DNA，就不能做此步。 具体步骤：1.混匀样品（如前面步骤1所述）后，4℃下，12,000*g离心样品10min；注意：离心后沉淀物质包含ECM、多糖和高分子量的DNA，RNA在上清液里，若样品富含脂肪，在上清液上面还有脂肪层；2.移除覆盖的脂肪层；3.将澄清的上清液移到新的离心管中。 3.进行相分离，或者储存已混匀的样品。此样品能在室温放置几个小时，或者在-60到-70℃至少一个月。 相分离 1. 室温静置已混匀样品（见混匀样品步骤）5min。 2. 每0.75mlTRIzol LS试剂加入0.2ml氯仿。盖紧离心管的盖子。 3. 使劲地手摇离心管15s。 4. 室温静置2-15min。 5. 4℃下，12,000*g离心样品15min。 注意：混合物被分为3层，上层是澄清的水相，中间层，下层是红色的酚-氯仿相，只有RNA被排除在水相里。上层水相体积约占TRIzol LS试剂最初体积的~70%。 6. 倾斜离心管为45°，小心地用移液器吸走水相，避免吸到中间层或者有机层。 7. 将水相移到新的离心管，然后进行RNA分离步骤。 8. 如果需要分离DNA和蛋白质，则保持中间层和酚-氯仿相有机层。详见DNA分离步骤和蛋白质分离步骤。有机相可在4℃保存过夜。 RNA分离步骤 当制备和处理RNA时，需要采取适当措施避免RNase污染。 RNA沉淀 1. （可选）当沉淀从少量样品（<106细胞或者<10mg组织）提取的RNA，需要添加5-10μg不含RNase的糖原作为水相的载体。注意：糖原是RNA的辅助沉淀剂，浓度≤4mg/ml时不会抑制第一链合成，也不会抑制PCR。 2. 每0.75mlTRIzol LS试剂加入0.5ml100%异丙醇到水相。 3. 室温静置10min。 4. 4℃下，12,000*g离心10min。 注意：离心前，RNA通常看不见，离心后，在离心管底部和侧面可见丝状沉淀物。 5. 进行RNA洗涤和重悬 RNA洗涤和重悬 1. 移走离心管里上清液，只留RNA沉淀。 2. 每0.75mlTRIzol LS试剂加入1ml 75%乙醇洗涤RNA沉淀。涡旋，混匀样品。 3. 4℃下，7500*g离心5min，弃上清液。 4. 真空或者空气干燥RNA沉淀5-10min，不要用真空离心干燥机干燥RNA沉淀。 注意：不要让RNA沉淀干燥太彻底，否则RNA沉淀溶解度降低，会使A260/280<1.6。 5. 用无RNase水或者0.5%SDS（20-50μL）重悬RNA沉淀，移液器上下轻轻吹溶液几次。 注意：如果要用于随后的酶反应中，就不要将RNA溶解在0.5%SDS里。 6. 在水浴槽55-60℃孵育10-15min。 7. 继续下游操作或者储存在-70℃。 DNA分离步骤 从相分离步骤中保存的中间层和酚-氯仿层提取DNA。 DNA沉淀 1. 移走覆盖在中间层上的残留水相层，这是涉及到DNA提取质量的关键一步。 2. 每0.75mlTRIzol LS试剂加入0.3ml 100%乙醇。 3. 盖紧离心管，上下颠倒几次，混匀样品。 4. 室温静置2-3min。 5. 4℃，2000*g离心5min，沉淀DNA。 6. 移走酚-氯仿层，如果需要提取蛋白质，则保留在新的离心管中。该上清液可在-70℃下保存数月。 7. 对DNA沉淀进行DNA洗涤和重悬。 DNA洗涤和重悬 1. 每0.75mlTRIzol LS试剂加入1ml柠檬酸钠/乙醇溶液（10%乙醇溶有0.1M柠檬酸钠，PH8.5）。 2. 室温静置30min，不定时轻轻地上下倒置混匀。 注意：DNA能在柠檬酸钠/乙醇溶液里保存2h。 3. 4℃，2000*g离心5min，弃上清液。 4. 再次洗涤（重复步骤1-3）。 注意：当DNA沉淀较多（>200μg）时，重复洗涤两次。 5. 每0.75mlTRIzol LS试剂加入1.5-2ml75%乙醇。 注意：DNA样品在75%乙醇4℃能保存数月。 6. 室温静置10-20min，不定时轻轻地上下倒置混匀。 7. 4℃，2000*g离心5min，弃上清液。 8. 真空或者空气干燥DNA沉淀5-10min，不要用真空离心干燥机干燥RNA沉淀。 9. 以0.2–0.3 μg/μL 浓度用8mM NaOH重悬DNA，每50-70mg组织或者1*107细胞加入8mM NaOH 0.3-0.6mL。 注意：我们高度建议用温和碱溶液重悬DNA，因为分离的DNA在水或者Tris缓冲液中重悬效果不好。 10. 4℃，12,000*g离心10min，移走不溶物质。 11. 将含DNA的上清液转移到新的离心管中，若需要，用HEPES调节PH，进行下游操作。DNA能在4℃保存过夜，要想长期保存，则需用HEPES调节PH7-8，添加1mM EDTA，保存在4℃或者-20℃。