FITC标记蛋白
基本原理:蛋白质分子的赖氨酸残基的游离ε-氨基可与FITC发生亲核反应,形成硫脲连接而共价结合,形成的偶联物的稳定性很好。该偶联反应在pH 9.8条件下进行。
试剂及仪器:
待偶联蛋白质,PBS,FITC,叠氮钠,
碳酸氢钠缓冲液:25m mol/L Na2CO3 / NaHCO3缓冲液pH9.8 (新鲜配制录)
电磁搅拌器
铝铂
操作步骤:
用碳酸氢钠缓冲液pH9.8稀释抗体为1-5mg/ml,或抗体对该缓冲液充分透析,以足以使赖氨酸不解离(去其正电荷),但注意保持大部分蛋白质仍未变性;
将透析袋放入100ml 含0 .1 mg/ml FITC的pH9.8碳酸氢钠缓冲液(新配制)的烧杯中,用铝铂包烧杯以避光,4℃搅拌过夜;
上述抗体液对PBS在4℃透析以终止反应。其间至少更换PBS液三次,直致480nm 的吸收为零;
加入0.5g/L 的叠氮钠。此后,结合物在4℃避光保存,或分装后在-20℃冻存。
荧光偶联质量的检测:
用标准免疫荧光染色试验以测定偶联率。
或用F/P值测定对其FITC标记质量进行鉴定:取结合物液0.2ml,加PBS 2.8ml(或两者均改用半量),测定其A490/A280,查 FITC标志曲线得其浓度μg/ml值,按IgG的消光系数(mg/ml约A280 1.2),可计算其F/P值,即每mg抗体所标记的μgFITC的比值,可以此鉴定及比较各批标记物的质量。
实验要点及说明:
偶联反应
要求
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在尽可能接近pH9.8的溶液中进行,而且注意在反应过程中要保持此pH水平;
要确定在偶联反应缓冲液中不含游离氨基(Tris,氨及叠氮钠均可与FITC反应,因此会降低蛋白质与FITC的偶联率);
FITC与蛋白质的比值(F/P),可通过测定495nm与280nm吸光度来鉴定。此比值的范围应为0.3-1.0;
FITC唯一的缺限是易被光淬灭,因此复合物必须始终避光保存;
如果FITC-复合物对PBS透析不充分,可能造成高本底,对免疫荧光染色产生干扰。